Методическая разработка лекционного занятия по хирургии
методическая разработка

Методическая разработка лекционного занятия по дисциплине: "Лечение пациентов хирургического профиля" для специальности 31.02.01 Лечебное дело 3 курс. Тема: " Асептика и антисептика в хирургии"

Скачать:

ВложениеРазмер
Файл aseptika_i_antiseptika.docx115.38 КБ

Предварительный просмотр:

Министерство здравоохранения Саратовской области

Государственное автономное профессиональное образовательное учреждение Саратовской области

«Балаковский медицинский колледж»

МЕТОДИЧЕСКАЯ РАЗРАБОТКА

ЛЕКЦИОННОГО ЗАНЯТИЯ

по теме:

« Асептика и антисептика в хирургии»

МДК 02.02 ЛЕЧЕНИЕ ПАЦИЕНТОВ ХИРУРГИЧЕСКОГО ПРОФИЛЯ

Специальность:  ЛЕЧЕБНОЕ ДЕЛО

Курс 3                

Балаково

2020 г.

Тема: Асептика и антисептика в хирургии. Методическая разработка лекционного занятия по МДК 02.02 Лечение пациентов хирургического профиля. Автор: Иванова Наталья Валерьевна. Балаково, 2020г. – 57 страницы издания:

«Утверждено»

на заседании ЦМК 1

Протокол №__ от «__» ____ 201__ г.

Председатель ЦМК   (Ф.И.О.)___________Корябкина Н.А.

            (подпись председателя)

«Согласовано»

с методическим кабинетом колледжа

методист колледжа

(Ф.И.О.)____________Каширова В.Ю.

                   (подпись методиста)

СОДЕРЖАНИЕ

  1. Пояснительная записка…………………………………………….4
  2. Технологическая карта лекционного занятия ……………………5
  3. План изложения теоретического материала ……………………..7
  4. Теоретический материал по теме занятия………………………...8
  5. Основные понятия и термины по теме …………………………...51
  6. Контрольно – оценочный материал……………………………….53
  7. Список рекомендуемой литературы…………………………….....54

Пояснительная записка

Методическая разработка лекционного занятия составлена в соответствии с требованиями Федерального Государственного образовательного стандарта по специальности «Лечебное дело» и программой ПМ 02 «Лечебная деятельность» МДК 02.02 «Лечение пациентов хирургического профиля».  

В методической разработке изложены понятия об асептике и антисептике, видах асептике и антисептике. Детально рассматриваются способы проведения профилактики экзогенных и эндогенных путей проникновения инфекции в организм, устройство хирургического отделения стационара и поликлиники, а также порядок работы в операционном блоке, способы предстерилизационной обработки инструментов, методы стерилизации и контроля стерильности.

Для успешного освоения темы необходимы фундаментальные знания, прежде всего основ сестринского дела и основы микробиологии. Используются знания, полученные на других дисциплинах общепрофессионального цикла: «Основы латинского языка с медицинской терминологией», «Фармакология».

Изучение МДК 02.02 «Лечение пациентов хирургического профиля» поможет в освоении других междисциплинарных курсов, изучаемых студентами на следующем году обучения: МДК 03.01 УТ Неотложные состояния в хирургии и травматологии, МДК 04.01 профилактика заболеваний и санитарно – гигиеническое образование населения.

Для изучения данной темы предусмотрено 2 часа лекционного, 8 часов практического занятия, 5 часов внеаудиторной работы, что составляет 15 часов.

Технологическая карта лекционного занятия

Учебные цели занятия: сформировать у студентов представление об асептике и антисептике, особенности асептики и антисептики в хирургии.

Иметь представление:

1. Об истории развития асептики и антисептики.

Знать:

1.источники и пути проникновения инфекции в организм и операционную рану;

2.методы профилактики воздушно – капельной инфекции, контактного инфицирования, профилактику имплантационного и эндогенного инфицирования;

3.виды и режимы стерилизации хирургических инструментов и других изделий медицинского назначения;

4.принципы работы хирургического отделения стационара и поликлиники, порядок работы в операционно – перевязочном болоке;

5.виды антисептики.

Изучение представленной темы способствует формированию следующих профессиональных компетенций: ПК 2.1, 2.2, 2.3, 2.4, 2.5, 2.6, 2.7, 2.8.

В ходе изучения темы «Асептика и антисептика в хирургии» осваиваются следующие общие компетенции: ОК 1, ОК 2, ОК 3, ОК 4, ОК 5, ОК 6, ОК 7, ОК 8, ОК 9, ОК 10, ОК 11, ОК 12, ОК 13, ОК 14.

Материальное обеспечение учебного занятия:

1.презентация,

2.мультимедийная установка,

3.ноутбук.

Распределение рабочего времени на учебном занятии:

Содержание занятия

Время

Методические указания

1. Организационный момент

2 мин.

Организация начала занятия, проверка внешнего вида студентов, регистрация отсутствующих.

2. Формулировка темы, ее мотивация, цели занятия

3 мин.

Сообщение темы и цели занятия, акцентирование внимания на ее значимость; сообщение плана занятия.

3. Проверка исходного уровня знаний

5 мин.

Проверка исходного уровня знания с помощью вопросов для фронтального опроса.

4. Изложение нового материала

70 мин.

Изложение нового материала по плану лекции.

5. Закрепление нового материала и подведение итогов занятия

5 мин.

Фронтальный опрос среди студентов, разъясняя трудные для их понимания вопросы.

6. Задание на самоподготовку

2 мин.

Сообщение домашнего задания и задания для самостоятельной внеаудиторной работы студентов. Рекомендации по выполнению задания.

7. Задание на дом

3 мин.

План изложения теоретического материала

1.История развития асептики и антисептики.

2.Понятие о внутрибольничной хирургической инфекции, путях ее распространения и профилактике.

3. Современное понимание асептики, ее основные принципы и виды.

3.1Профилактика воздушной инфекции.

3.1.1 Организация работы хирургического отделения стационара и поликлиники.

3.1.2 Планировка помещения с зонами повышенной стерильности, порядок работы в операционно-перевязочном блоке, виды уборки.

3.2Профилактика  капельной инфекции.

  1. Профилактика  контактной инфекции.

3.3.1Методы стерилизации.

3.3.2Методы контроля стерильности.

3.3.3Дезинфекция, предстерилизационная обработка и стерилизация хирургических инструментов, стеклянной и эмалированной посуды, резиновых и керамических изделий.

3.3.4Подготовка и укладка перевязочного материала, операционного белья и перчаток в бикс.

3.3.5Хирургическая обработка рук различными способами.

3.3.6Способы обработки операционного поля.

4.Профилактика  имплантационной инфекции. Стерилизация шовного материала.

5.Виды антисептики (механическая, физическая, химическая, биологическая).

5.1Методы дренирования (пассивное, активное, проточно-промывное), виды дренажей.

5.2Основные  группы антисептических и дезинфицирующих средств, способы их применения.

5.3Биологическая антисептика.

  1. Возможные осложнения при использовании различных видов антисептики и способы их профилактики.

Содержание теоретического материала

Хирургия – это область медицины, изучающая обширную группу заболеваний и травм, для лечения которых применяют оперативное вмешательство, т.е. используется механическое и физическое воздействие на пораженные органы и ткани организма.

  1. История развития асептики и антисептики

Долгое время гнойная инфекция была злейшим врагом хирургии, она сводила на нет результаты блестяще выполненных операций. Многие больные погибали от сепсиса. Всего лишь около ста пятидесяти лет назад, когда хирурги ничего не знали о существовании микробов и об их роли в возникновении гнойных осложнений, операции проводились немытыми руками, нестерильными инструментами с красивыми резными деревянными или костными ручками, в углублениях которых оставались следы крови, гноя от ранее сделанных операций.

Хирурги одевались на операцию в самые старые мундиры, вытирали кровь в ране губками. Раны перевязывали корпией – это нащипанные из старого белья обрывки нитей. Неудивительно, что все раны нагнаивались.

Известно, что первым борьбу с микробным заражением ран начал английский хирург Дж. Листер. В 1867г., основываясь на опытах Л.Пастера, он сделал важное открытие: причиной нагноения операционных ран являются живые микроорганизмы, попадающие в рану из воздуха, с инструментов и рук хирурга.

Для борьбы с инфекцией Листер предложил использовать карболовую кислоту. Свою знаменитую «карболку» он распылял в воздухе операционной комнаты, карболкой обрабатывал руки хирурга, инструменты, на рану накладывали повязки, пропитанные карболовой кислотой.

Первые результаты Листера потрясли хирургов – ему удалось сохранить ногу больному при многооскольчатом открытом переломе костей голени. До Листера, чтобы не рисковать жизнью больного, в таких случаях делали ампутацию. Так в хирургии началась новая эпоха, было положено начало антисептическому методу работы, который вскоре получил широкое распространение во всем мире, в том числе и в России.

В конце 80- х годов XIX столетия профессора Дерптского (ныне г.Тарту) университета Е.Бергманн и К.Шиммельбуш предложили для оббезараживания перевязочного материала и инструментов использовать физические методы- высокую температуру: кипячение и обработку паром под давлением. Метод получил название асептического.

Сочетание листеровской антисептики и асептики дало удивительные результаты – резко уменьшилось количество гнойных осложнений и сепсиса. И это послужило колоссальным толчком в развитии всей хирургии.

Однако вскоре выяснилось, что карболовая кислота очень токсична, причем не только для больного, но и для участников операции. Карболовую кислоту сменили сулемой (дихлорид ртути), еще более токсичное вещество. На смену сулеме пришли другие антисептические вещества.

Во второй половине XX в.в медицинской практике, в частности для лечения хирургических инфекций, стали применять антибиотики.

Благодаря дальнейшему совершенствованию асептики и антисептики дисциплины хирургического профиля достигли небывалого развития. Для хирургического вмешательства стали доступны практически все органы и ткани.

В соответствии с современными взглядами понятие асептика включает в себя весь комплекс профилактических мероприятий, направленных на недопущение микробного загрязнения во время операций, перевязок, инъекций и выполнения любых лечебно – диагностических приемов. Для достижения этой цели используют как санитарно – гигиенические и организационные мероприятия, так и физические методы обеззараживания.

Сегодня асептика основной закон хирургии, он требует, чтобы все, что соприкасается с раневой поверхностью были стерильными, т.е. свободными от микроорганизмов и их спор.  Только строгое соблюдение всех правил асептики, высокая дисциплина, точность и аккуратность в соблюдении различных приемов и «мелочей» гарантирует безопасность хирургических операций в смысле возникновения послеоперационных гнойных осложнений.

  1. Понятие о внутрибольничной хирургической инфекции, путях ее распространения и профилактике.

Внутрибольничная инфекция (ВБИ, нозокомиальная)- это любое клинически распознаваемое инфекционное заболевание, которое поражает больного в результате его поступления в больницу или обращения в нее за лечебной помощью, или инфекционное заболевание сотрудника вследствие его работы в данном учреждении.

Проблема ВБИ является приоритетной по ряду причин:

1.  инфекция, полученная больным в стационаре, значительно повышает расходы на его лечение, т.к. предполагает использование дорогостоящих антибиотиков и увеличивает сроки госпитализации;
2.  присоединение ВБИ к основному заболеванию нередко сводит на нет результаты лечения (операций), увеличивает длительность пребывания больного в стационаре;

3.  способствует повышению устойчивости микроорганизмов к химиопрепаратам и антибиотикам;

4.  ВБИ - основная причина болезни и смерти новорожденных, особенно недоношенных;
5. длительная потеря трудоспособности  больного в связи с ВБИ несет значительные финансовые проблемы для больного и его семьи;

6.  наносит существенный вред здоровью медицинского персонала.

Причины роста ВБИ:

1. ухудшение социально-экономического состояния страны, негативно влияющее на качество оказываемой медицинской помощи,

2.  работа ЛПУ в условиях ограниченного финансирования (недостаток медикаментов, антисептиков, моющих, дезинфицирующих средств, медицинского инструментария, белья, стерилизационного оборудования),

3. существование больниц и отделений, не отвечающих современным требованиям;

4.  оснащение ЛПУ сложной медицинской техникой выдвинуло проблему особых методов дезинфекции и стерилизации аппаратуры,

5. расширение спектра и утяжеления операций, снижающий иммунный ответ;

6. создание крупных больничных комплексов с колоссальной концентрацией на ограниченной площади лиц со сниженным иммунным статусом способствует появлению условий для перекрестных заражений и формированию госпитальных штаммов возбудителей,

7.  бесконтрольный прием антибиотиков и химиопрепаратов, способствующий появлению лекарственно устойчивых микроорганизмов.

Госпитальная инфекция имеет ряд характерных особенностей:

  1. возбудители устойчивы к основным антибиотикам и антисептическим средствам. Это связано с культивированием микрофлоры в условиях хирургического стационара, где в воздухе, на поверхностях, в организме больных имеются низкие концентрации антимикробных средств;
  2. возбудители ВБИ – это обычно условно- патогенные микроорганизмы, наиболее часто стафилококк, кишечная палочка и пр.;
  3. ВБИ возникает у ослабленных в результате болезни или операции пациентов;
  4. способность к длительному выживанию;
  5. постоянная циркуляция среди больных и персонала
  6. часто возникают массовые поражения одним штаммом микроорганизма, проявляющиеся сходной клинической картиной заболевания (осложнения).

По локализации патологического процесса выделяют следующие группы ВБИ:

1.инфекции мочевыводящих путей (ИМВП) . 80% из них связаны с использованием мочевых катетеров. Возбудители – кишечная палочка (70%), синегнойная палочка, протей, клебсиелла;

2. инфекции области хирургического вмешательства (ИОХВ);

3.инфекции нижних дыхательных путей (ИНДП) . Госпитальные пневмонии  развиваются через 48 ч  после госпитализации (пневмония, ассоциированная с ИВЛ, послеоперационная пневмония, вирусные инфекции дыхательных путей, легионеллез, грибковая пневмония, туберкулез);

4.инфекции кровотока (сепсис). Летальность достигает 35-40%;

5.другие локализации – 12-50%.

        Источники госпитальных инфекций:

1. больные, поступающие в период инкубации болезни (корь, ветряная оспа, эпидемический паротит и др.) или при нераспознанном заболевании. Существенная категория источников— бактерионосители сальмонелл, стафилококков,пневмоцист, клебсиелл.

2.медицинский персонал, при наличии у них нераспознанной болезни,

а также носительства патогенных или условно-патогенных возбудителей. Медицинский персонал часто бывает носителем золотистого стафилококка, возбудителей кишечных инфекций, у части сотрудников выявляют заболевания мочеполового тракта, дыхательной системы и т.д. Периодически нарушая гигиенические требования, медицинские работники могут быть источником инфекции.

3.лица, привлекаемые к уходу за пациентами. Роль посетителей стационаров, как источников ВБИ - незначительна.

Все они могут быть носителями инфекции, а также болеть (как правило, в легкой или скрытой форме), находиться в стадии выздоровления или инкубационном периоде. Источником инфекции могут быть и животные (кошки, грызуны).

Механизм передачи инфекции

ВБИ характеризуется множественными механизмами передачи возбудителей. Из естественных механизмов передачи в стационарах наиболее интенсивно реализуется аэрозольный. Он способствует возникновению заболеваний и вспышек инфекций дыхательных путей (грипп и другие ОРВИ, стафилококковая, стрептококковая инфекции).  Фекально-оральный механизм передачи  приводит к возникновению внутрибольничных кишечных инфекций. Контактный механизм передачи возбудителей реализуется через предметы ухода за пациентами, белье, руки; имеет ведущее значение при инфекциях, вызываемых  грамотрицательными бактериями, при стафилококковой инфекции. В медицине сформировался новый механизм заражения возбудителями инфекционных болезней. Его назвали артифициальным  (искусственный). Заражения при этом механизме может реализовываться : ингаляционным путем  (искусственная вентиляция легких, интубация); контактным путем  (неинвазивные лечебные и диагностические манипуляции); энтеральный путь заражения (фиброгастродуоденоскопия, энтеральное питание); парентеральный путь заражения  (инвазивные лечебные и диагностические манипуляции).   

В связи с этим основными мероприятиями по борьбе с госпитальной инфекцией включают в себя:

1.перед проведением плановых операций необходимо обеспечить выявление и санацию очагов хронической инфекции на догоспитальном уровне;

2.сокращение предоперационного койко – дня;

3.сокращение длительности послеоперационного периода, ранняя выписка пациентов с контролем на дому. Каждый лишний день пребывания в стационаре увеличивает риск присоединения ВБИ;

4.разделение потоков больных, гнойных и чистых палат, отделений, операционных и оборудования;

5.предупреждение перекрестного инфицирования: использование одноразового белья, полотенец, перчаток и т.д.;

6.дезинфекция рук персонала перед и после контакта с больным;

7.дезинфекция матрацев, подушек, одеял и др.;

8.рациональное назначение антибиотиков.

Огромное значение в профилактике ВБИ в ЛПУ имеет дезинфекционно – стерилизационные мероприятия, направленные на уничтожение всех вегетативных и споровых форм микроорганизмов в воздухе, на объектах в окружении больного, изделиях медицинского назначения.

Источником ВБИ могут быть медицинские работники, поэтому, все медицинские работники, непосредственно оказывающие медицинскую помощь и осуществляющие уход за больными, проходят следующие обследования:

1.рентгенологическое обследование на туберкулез – флюорография грудной клетки (в дальнейшем 1 раз в год);

2.исследование крови на гепатит «С» (в дальнейшем 1 раз в год);

3. исследование крови на гепатит « В» не привитых (в дальнейшем 1 раз в год), привитые обследуются через 5 лет, затем ежегодно при отсутствии ревакцинации;

4. исследование крови на «ВИЧ» (в дальнейшем 1 раз в год);

5. исследование крови на сифилис (в дальнейшем 1 раз в год);

6. исследование мазков на гонорею (в дальнейшем – по показаниям).

Проводятся лабораторные исследования: общий анализ крови и общий анализ мочи, в дальнейшем 1 раз в год перед периодическим медицинским осмотром.

Персонал стационаров хирургического профиля подлежит профилактической иммунизации против гепатита В. В ЛПУ должен быть налажен учет травм и чрезвычайных ситуаций (порезы, уколы и т.д.), связанных с профессиональной деятельностью персонала.

3.Современное понимание асептики, ее основные принципы и виды

Асептикой называют комплекс мероприятий, направленных на предупреждение попадания микроорганизмов в рану.

В современной асептике сохранили своё значение два основных её принципа:

•  всё, что соприкасается с раной, должно быть стерильно;

•  всех хирургических больных необходимо разделять на два потока: «чистые» и «гнойные».

        Выделяют два главных источника контаминации: экзогенный и эндогенный.

1.Экзогенный источник означает попадание микробов в рану из внешней среды:

- из воздуха (пыль)- воздушная инфекция;

- с брызгами слюны и др.жидкостей (капельная инфекция);

- из всего,  что соприкасается с раной (инструменты, перевязочный материал, руки) – контактная инфекция;

- со всем, что оставляется в ране (шовный материал, протезы металлоконструкции) – имплантационная инфекция.

2.Эндогенный источник означает попадание микробов в рану из очагов латентной инфекции, находящихся в организме (кариес, тонзиллит, аднексит), лимфогенным и гематогенным путями.

Для борьбы с экзогенной инфекцией используются методы асептики, а эндогенную инфекцию уничтожают методами антисептики.

3.1 Профилактика воздушной инфекции

Предупреждение воздушной инфекции осуществляется следующими мероприятиями:

- планировка хирургических отделений;

- устройство и планировка операционного блока;

- система организации работы хирургического отделения и операционного блока;

-устройство правильной вентиляции операционных и перевязочных, оснащение больниц кондиционерами;

-влажная уборка помещений,

- регулярное проветривание и облучение помещений УФЛ;

- нахождение в отделение в специальной одежде;

-сокращение времени контакта с воздухом открытой раны.

3.1.1Организация работы хирургического отделения стационара и поликлиники

Приемное отделение является первым отделением хирургического стационара, куда доставляется (или обращается) больной по поводу предполагаемого у него хирургического заболевания. Очень важно, чтобы в результате ошибочного диагноза в хирургическое отделение не попадали больные, страдающие инфекционными заболеваниями. В тех случаях, когда у больного подтверждается наличие хирургического заболевания, он госпитализируется в отделение по профилю. Если возникает необходимость в немедленном выполнении операции, больной из приемного отделения направляется в операционную. Когда диагноз вызывает сомнение, больной находится в диагностической палате приемного отделения с целью дальнейшего наблюдения.

В приемном отделении оформляют историю болезни, больного подвергают санитарной обработке и переодевают в больничную одежду.

Хирургическое отделение стационара состоит из больничных палат, сестринского поста, процедурного кабинета, перевязочных, санитарных узлов, кабинетов заведующего отделения и врачей, подсобных помещений.

Хирургические отделения не должны располагаться на первом этаже стационара. В норме на 1 койку должно приходится 6,5 – 7,5 м кв. Количество коек в палате не больше 6, послеоперационные палаты располагаются изолированно от отделения, лучше в специальных пристройках.

Хирургическое отделение должно быть приспособлено для тщательной многократной  влажной уборки с применением антисептических средств. Для этого полы должны быть каменными или заливными,  либо покрыты линолеумом. Стены выложены плиткой или окрашены краской. Мебель в палатах должна отвечать требованиям: не портиться от мытья и влажной дезинфекции, свободно передвигаться. Лишних предметов мебели в палатах быть не должно. Влажная уборка помещений производится ежедневно утром и вечером.

В хирургическом отделении обязательно использование спецодежды. Все работники должны иметь сменную обувь, халаты или специальные костюмы из легкой ткани, регулярно проходящие стирку. Оптимальным является использование санпропускника: сотрудники, приходящие на работу, принимают душ, снимают с себя повседневную одежду и надевают костюмы (халаты). Выход в спецодежде за пределы отделения не разрешается.

Важное значение для профилактики ВБИ имеет правильное размещение больных в отделении. Четкое разделение «чистых» и «гнойных» больных.

В структуре хирургического отделения с коечным фондом на 30 и более пациентов необходимо иметь две перевязочные – для проведения «чистых» и «грязных» перевязок. В отделении, имеющим до 30 коек, допускается наличие одной перевязочной. Очередность перевязок планируется с учетом чистоты раны.

В поликлинике обеспечивается приём больных с хирургическими заболеваниями и лечение тех из них, которые не нуждаются в стационарном лечении. Большинство больных посещают отделение повторно для перевязок и лечебных процедур.

Хирургическое отделение поликлиники должны располагаться, если нет лифта, на первом или втором этаже. Это облегчает посещение их больными с заболеваниями нижних конечностей и доставку носилочных больных. При одном работающем хирурге отделение должно включать: кабинет врача, перевязочную, операционную, стерилизационную и материальные комнаты. При большом числе работающих хирургов операционная, стерилизационная, материальная могут быть общими, но кабинет и перевязочная должны быть отдельно для каждого врача.

Стены должны быть гладкими и во всех кабинетах на высоту не менее двух метров окрашены масляной краской, стены операционной покрыты плиткой. Все комнаты хирургического отделения должны иметь умывальники. Помещения хирургического кабинета нужно особенно тщательно оберегать от загрязнения. Меняющийся за время приёма контингент больных, доставка больных в загрязнённой после травм одежде способствует занесению грязи в хирургический кабинет. Поэтому необходимо часто протирать полы кабинетов и перевязочных влажным способом, используя антисептические жидкости, лишённые неприятного запаха. Влажная текущая уборка помещения (пол, стены) должна производиться после каждого приёма. По окончанию дневной работы производится полная уборка кабинета.

Работа хирурга в поликлинике существенно отличается от работы хирурга в стационаре. В отличие от хирурга стационара, амбулаторный хирург имеет значительно меньше времени на каждого больного и часто лишён возможности точно распределить часы своей работы, особенно там, где нет отдельного травматологического кабинета. Обращение больных за неотложной хирургической помощью (вывихи, переломы, ранения) требуют остановки текущего приёма и оказание в первую очередь помощи пострадавшему, однако, это не освобождает хирурга от оказания помощи и всем остальным больным, записанным на приём.

Хирург участвует в консультациях с врачами других специальностей, решает вопросы плановой и экстренной госпитализации больных, вопросы трудоспособности, трудоустройства. Помимо лечебной, консультативной работы поликлинический хирург проводит диспансеризацию отдельных групп больных (варикозное расширение вен, тромбофлебиты, остеомиелиты, грыжи, после операций по поводу язвы желудка и т.п., а так же инвалидов ВОВ). В некоторых случаях неотложной хирургии врачу приходиться посещать больных на дому, где при отсутствии дополнительных методов исследования, он обязан поставить правильный диагноз и решить тактику дальнейшего лечения больного.

3.1.2Планировка помещения с зонами повышенной стерильности, порядок работы в операционно-перевязочном блоке, виды уборки

Особенно важно проводить профилактику воздушной инфекции в операционном блоке и перевязочных. Этому в значительной степени способствуют планировка и отделка их помещений, а также правильное содержание и уход за ними.

Операционный блок удаляют от хирургических отделений. Лучше размещать его в изолированном помещении,  соединенном  с отделением переходом и связанном с отделением реанимации и интенсивной терапии.

Операционный зал и перевязочная должны быть просторными, светлыми, иметь широкие окна, выходящие на север или северо-восток (нет воздействия прямых солнечных лучей), и снабженными специальными устройствами для вентиляции - кондиционерами. Стены и пол помещений операционного блока и перевязочной должны быть покрыты водостойкими неорганическими материалами, непроницаемыми для пыли, и быть гладкими (обычно используется кафельная плитка). Все места соединения стен, пола и потолка должны быть закругленными и выполнены из материалов, устойчивых к влаге и температурным колебаниям, допускающих многократное мытье и дезинфекцию.

Для предотвращения загрязненности воздуха в непосредственной близости от операционной раны при организации операционного блока соблюдают принцип зональности. Существуют четыре зоны стерильности в операционной:

1.стерильная зона ( операционные залы, стерилизационная).

2.зона строгого режима  (предоперационная,  наркозная, аппаратная, моечная).

3.зона ограниченного режима (инструментально -  материальная, лаборатория срочных анализов, комната для персонала,  хирургов, протокольная).

4.зона общебольничного режима (помещения, вход в которые не связан с прохождением через предыдущие зоны: кабинеты заведующего оперблоком, старщей медсестры).

Уборка операционной всегда осуществляется влажным способом. Существуют следующие виды уборки операционной:

1. предварительная - проводится утром перед началом работы. Все горизонтальные поверхности (пол, столы и подоконник) протираются влажной тряпкой, чтобы собрать пыль, осевшую за ночь. Включаются бактерицидные ультрафиолетовые лампы для дезинфекции воздуха;

2. текущая - проводится во время операции. Санитарка собирает с пола все случайно упавшие шарики, салфетки, вытирает попавшую на пол кровь или другую жидкость;

3.промежуточная - проводится между операциями. Убирается весь материал, использованный во время операции, пол протирается влажной тряпкой;

4.окончательная - проводится в конце операционного дня. Все предметы оборудования операционной и ее пол обрабатываются дезинфицирующим раствором;

5) генеральная - проводится по плану в свободный от операций день один раз в неделю.

Таким же образом осуществляется уборка перевязочных и в хирургических отделениях.

Температура воздуха в операционной и перевязочной должна быть в пределах 22-25°С при влажности 50% и вентиляции, обеспечивающей обмен воздуха 3-4 раза в 1 ч. Во внерабочее время операционные и перевязочные должны быть закрыты.

        Освещение, отвечающее современным требованиям, обеспечивают бестеневые лампы. Освещение дублируется аварийной сетью, действующей от аккумуляторов.

        В операционной должна быть четкая организация труда и всего персонала. Число персонала, которому разрешено входить в операционную, особенно после начала операции, должно быть сведено к минимуму. В операционной не должно быть лишних людей, запрещается ведение лишних разговоров.

Запрещается ношение в операционных и других взрывоопасных помещениях одежды из шерсти, шелка и синтетических материалов, сильно электризующихся при движении, что приводит к быстрому накоплению зарядов на теле человека. Обувь должна быть на кожаной или другой электропроводной резины, поверх должны надеваться бахилы. Перед операцией все участники переодеваются в зоне санпропускника.

3.2 Профилактика  капельной инфекции

Предупреждение капельной инфекции во время операций и перевязок осуществляется:

1.ношением многослойной марлевой маски;

2.категорическим запрещением разговоров на посторонние темы в операционной;

3.запрещением пребывания в оперблоке лиц, страдающих катаром верхних дыхательных путей.

В современных операционных залах студенты и врачи наблюдают за ходом операции через стеклянный потолок, широко используется телевидение.

3.3 Профилактика   контактной инфекции

Контактная инфекция – один из самых частых источников инфицирования ран. Она происходит от внесения инфекции в рану через любые предметы, непосредственно соприкасающихся с раной (перчатки, инструменты, белье, перевязочный материал, дренажи, тампоны) и руки. Профилактика контактной инфекции обеспечивается стерилизацией всех предметов, соприкасающихся с раной.

Стерилизация – метод, обеспечивающий гибель вегетативных, споровых форм патогенных и непатогенных микроорганизмов в стерилизуемом материале.

3.3.1 Методы стерилизации

В современной асептике используются физические и химические методы стерилизации.

К физическим методам относятся стерилизация паром под давлением (автоклавирование), стерилизация горячим воздухом (сухожаровой шкаф), а также воздействие ультрафиолетовым излучением, токами высокой частоты, ультразвуковыми колебаниями, радиоактивным излучением  (лучевая стерилизация), инфракрасными лучами и т. д..

Стерилизация паром под давлением (автоклавирование)

         При этом способе стерилизации действующим агентом служит

 горячий пар.

         Метод автоклавирования применяется для стерилизации хирургического инструментария, перевязочного материала, белья, перчаток  и других материалов, которые помещают в автоклав в специальных металлических коробках - биксах Шиммельбуша. Биксы имеют боковые отверстия, которые перед стерилизацией открывают. Крышку бикса плотно закрывают.

После загрузки биксов автоклав закрывают герметичной крышкой.

Основные режимы стерилизации:

•  при давлении 1,1 атм (t = 120 0С) – 45 минут;

•  при давлении 2 атм (t = 132 0С) - 20 мин.

По окончании стерилизации биксы некоторое время остаются в горячем автоклаве для просушки при немного приоткрытой дверце. При извлечении биксов из автоклава закрывают отверстия в стенках биксов и отмечают дату стерилизации (обычно на прикреплённом к биксу кусочке клеёнки). Закрытый бикс сохраняет стерильность находящихся в нём предметов в течение 72 ч (3 сут).

Стерилизация горячим воздухом (сухим жаром)

Действующим агентом при этом способе стерилизации служит нагретый воздух. Стерилизацию осуществляют в специальных аппаратах - сухожаровых шкафах-стерилизаторах. Сухим жаром стерилизуют предметы из стекла, металла и термостойких пластиков. Стерилизация может проводиться в упаковках из специальной бумаги или крафт – пакетах, либо открытым способом на решетке. После стерилизации открытым способом инструмент не хранится, а сразу используется. Стерильный инструментарий в специальной бумаге и крафт – бумаге хранится в течение 3 суток.

Существует два режима стерилизации:

1.при температуре 160 0С  в течение 150 мин;

2.при температуре180 0С в течение 1 ч.

Лучевая стерилизация

Осуществляется с помощью ионизирующего излучения (гамма-лучи). Это заводской метод (непосредственно в стационарах её не проводят). Применяется для стерилизации одноразовых инструментов (шприцев, шовного материала, катетеров, зондов, систем для переливания крови, перчаток и пр). Стерилизацию осуществляют в герметичных упаковках, при целостности упаковки стерильность сохраняется до 5 лет.

Химические методы стерилизации

К химическим методам относят газовую стерилизацию и стерилизацию растворами антисептиков.

Газовая стерилизация

Стерилизующими агентами служат пары формалина  или окись этилена. Инструменты, уложенные на сетку, считают стерильными через 6 - 48 ч (в зависимости от компонентов газовой смеси и температуры в камере). Отличительная особенность метода - его минимальное отрицательное влияние на качество инструментария, поэтому способ используют прежде всего для стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих инструментов.

     В настоящее время всё большее распространение находит способ стерилизации в озоново-воздушной камере. Активным агентом служит озон, который смешивается с воздухом. Время стерилизации 90 мин. Преимущество этого метода состоит в его надёжности, быстроте, сохранении всех свойств обрабатываемых материалов и абсолютной экологической безопасности.

Стерилизация растворами антисептиков

Стерилизации могут подвергаться резиновые медицинские предметы, эндоскопические части аппаратов, металлические инструменты, лигатурный шовный материал. Метод является вспомогательным, поскольку изделия нельзя простерилизовать в упаковке, а по окончании их необходимо промыть стерильной жидкостью (0,9% раствор натрия хлорида), что при нарушении правил асептики может привести к вторичному отбсеменению простерилизованных изделий. Для стерилизации используют 6% раствор перекиси водорода, «Дезоксон- 1», первомур (смесь из муравьиной кислоты и перекиси водорода), «Лизофармин – 3000», «сайдекс» и т.д. Изделия в разобранном виде полностью погружаются в раствор на время стерилизации, затем отмываются в стерильной воде. 

3.3.1 Методы контроля стерильности

Стерильность медицинских принадлежностей подвергается обязательному контролю. Контроль стерильности  осуществляется двумя способами:

-  прямым (бактериологическое исследование микробной обсемененности хирургических инструментов)

-  непрямым (индикаторы стерильности, кристаллические химические вещества с известной температурой плавления, термометры и др.).

Прямой способ контроля стерильности

Бактериологический метод контроля стерильности является наиболее точным. Забор проб на стерильность проводит операционная сестра под руководством сотрудника бактериологической лаборатории, с соблюдением строжайших правил асептики. Хирургический инструментарий с помощью стерильного пинцета извлекают из бикса и производят смыв с поверхности инструмента марлевой салфеткой. В бактериологической лаборатории производят посев на различные питательные среды и через несколько дней определяется бактериологическая загрязненность. Материал стерилен при отсутствии роста во всех посевах.

Непрямой способ контроля стерильности

Непрямые методы контроля используются при термических способах стерилизации и позволяют определить температуру, при которой производилась стерилизация, не давая ответ на вопрос о присутствии или отсутствии микрофлоры. Проверку температурного режима осуществляют с помощью максимальных термометров, которые помещают в контрольные точки стерилизаторов.  Кроме этого в настоящее время широко используются химические индикаторы. Индикатор представляет собой полоску бумаги, на одной стороне которой нанесен индикаторный слой, изменяющий свой цвет до цвета эталона при соблюдении режима стерилизации. Использованные индикаторы  подклеиваются в журнал учета стерилизации  и храниться в качестве документа архива в течение 12 месяцев после использования. Существующие типы индикаторов: «МедИС», «Интест – П», «Стеритест – П», «Стериконт» и т.д.

Преимущества индикаторов:

• на каждом индикаторе напечатан эталон конечного цвета индикаторной метки, который она приобретает при соблюдении параметров стерилизации;

• четкий, контрастный цветовой переход индикатора облегчает визуальный контроль и повышает его точность;

• липкий слой на обратной стороне индикатора облегчает его закрепление на стерилизуемых упаковках;

• индикаторы обеспечивают документирование стерилизации;

• срок годности индикаторов - 24 месяца.

3.3.3 Дезинфекция, предстерилизационная обработка и стерилизация хирургических инструментов, стеклянной и эмалированной посуды, резиновых и керамических изделий

Деконтаминация (процесс уничтожения микроорганизмов в целях обеспечения инфекционной безопасности) хирургического инструментария складывается из дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации.

        После использования инструменты промываются в емкости с дезинфицирующим раствором и погружаются в другую емкость с дединфицирующим раствором так, чтобы раствор полностью покрывал инструменты. Экспозиция выдерживается в зависимости от применяемого дезинфицирующего раствора.

        После обеззараживания инструменты промываются проточной водой. Предстерилизационная   очистка (ПСО) проводится путем погружения инструментов в моющий раствор, в состав которого входят моющее средство, перекись водорода и вода. Экспозиция 15 – 20 минут при 40 – 450 С. После этого инструменты моются щеткой в этом же растворе, а затем промываются в проточной и дистиллированной воде. Высушивание проводится в естественных условиях на простыне или в сухожаровом шкафу.  Современные дезсредства позволяют объединить дезинфекцию и очистку в один этап. Перечень этих средств достаточно обширен: Аламинол, Виркон, Новодез и т.д. использование их позволяет сделать процесс обработки инструментов менее трудоемким, сократить время пребывания инструментов в химических растворах, большинство из них содержит антикоррозийные добавки.

        После ПСО инструментов проводится контроль качества ПСО, путем постановки азопирамовой или амидопириновой пробы на наличие остаточных количеств крови, фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств моющего средства. Контроль качества проводится ежедневно. Контролю подлежит 1% одновременно обработанных изделий одного наименования (но не менее трех изделий). Результаты регистрируются в журнале.

        Стерилизация хирургических нережущих инструментов проводится в автоклаве или сухожаровом шкафу. Режущие инструменты стерилизуются в сухожаровом шкафу или холодным химическим методом. Стерилизация резиновых принадлежностей, стеклянной и эмалированной посуды проводится путем автоклавирования.

        В последнее время все чаще используются одноразовые медицинские инструменты, резиновые и пластмассовые принадлежности, подрергшиеся лучевой заводской стерилизации. Для стерилизации эндоскопического оборудования чаще применяют холодный химический метод, но возможно применение газового способа.

3.3.4  Подготовка и укладка перевязочного материала, операционного белья и перчаток в бикс

        Перевязочный материал – материал, применяемый во время операций, перевязок для осушения ран и полостей, защиты их от вторичного инфицирования, дренирования, а также тампонады с целью остановки кровотечения.

        К  перевязочному материалу относят марлю, вату, полипропиленовые, полиэфирные  и целлюлозные ткани и другие ткани, из которых изготавливают перевязочные средства (тампоны, турунды, салфетки, бинты и др.).

Перевязочные материалы и средства должны:

  • хорошо впитывать и испарять влагу;
  • не замедлять регенеративные процессы в ране;
  • не вызывать аллергических реакций;
  • обладать достаточной прочностью и эластичностью;
  • не изменять своих свойств при стерилизации, контакте с лекарственными препаратами и раневым отделяемым.

Наиболее часто в качестве перевязочного материала используют марлю.  Из марли готовят салфетки трех размеров (большие, средние и малые), шарики, турунды.

Недостатки марли:

  • при контакте с вязким экссудатом марля через 8 часов утрачивает гигроскопичность, что требует частой смены повязок при лечение гнойных ран.
  • ввиду высокой адгезии (прилипания) марли к стенкам раны замедляются регенеративные процессы, перевязки болезненны, при этом травмируется грануляция, в результате чего может возникнуть вторичное кровотечение.

К операционному белью относят хирургические халаты, хирургические костюмы, простыни, полотенца, полотняные салфетки, шапочки, маски, бахилы.

Перевязочный материал и операционное белье стерилизуют паром под давлением (автоклавирование) или пользуются готовыми, стерилизованными в заводских условиях, материалом и бельем (стерильные салфетки, шарики, вата, бинты, одноразовые перчатки, маска и медицинская шапочка).

        Одним из обязательных условий эффективной стерилизации является правильная упаковка изделий, выбор оптимальных защитных упаковок.

Перевязочный материал и операционное белье  укладывают в металлические биксы. При отсутствии биксов допускается стерилизация перевязочного материала в двухслойных полотняных мешках. К крышке бикса прикреплена бирка из клеенки с названием содержимого, названия отделения, здесь же проставляются: дата стерилизации, фамилия и подпись осуществляющего стерилизацию. Перед закладкой бикс выстилают чистой простынкой (в два слоя) так, чтобы она закрывала дно, стенки бикса и свешивалась через края бикса. Далее производят закладку бикса материалом. Загруженный материал укрывают сверху свободными краями простыни и закрывают бикс. «Окошки» бикса должны быть открыты для проникновения горячего пара внутрь.

Сложенное операционное белье укладывается вертикально, умеренно плотно. Если между вертикально уложенными слоями белья свободно проходит кисть руки, белье уложено правильно. Перевязочный материал – шарики, салфетки – укладывают по счету, завернутыми в салфетку, т.к. после операции их пересчитывают, чтобы не оставить инородное тело в полости.

Существует 3 вида укладки бикса:

1. Универсальная укладка. Обычно используют при работе в перевязочной и при малых операциях. Бикс условно разделяют на секторы, каждый из них заполняют определённым видом перевязочного материала или белья: в один сектор помещают салфетки, в другой - шарики, в третий - тампоны и т.д.

2.Целенаправленная укладка. Предназначена для выполнения типичных манипуляций, процедур и малых операций. Например, укладка для трахеостомии, катетеризации подключичной вены, перидуральной анестезии и пр. В бикс укладывают все инструменты, перевязочный материал и бельё, необходимые для осуществления процедуры.

3.Видовая укладка. Обычно используют в операционных, где необходимо большое количество стерильного материала. При этом в один бикс, например, укладывают хирургические халаты, в другой - простыни, в третий - салфетки и т.д.

        В качестве упаковочного материала используют пергаментную бумагу, «крафт»- бумагу, пакеты, которые при температуре свыше 1000 открывают поры и пропускают пар, а при ее снижении создают полную герметизацию. На внешней стороне таких пакетов нанесен химический индикатор. Пакеты герметично закрываются с помощью самоклеющейся ленты, нанесенной на клапан пакета, без использования дополнительного оборудования. Размер пакетов подбирается таким образом, чтобы между материалом и краем термошвом оставался промежуток не менее 3 см. материал при заполнении пакета должен занимать не более ¾ возможного объема, чтобы швы не были напряжены. Перед запечатыванием пакетов из них ладонью необходимо выдавить воздух.

        В упаковочные пакеты и биксы кладут по три индикаторные полоски.

Допустимый срок хранения материала после стерилизации в обычных биксах – 3 суток, если биксы не открывались; в биксах с фильтрами – 20 суток; в специальных упаковочных пакетах до 3 месяцев. При стерилизации гамма – излучением – 5 лет.

Стерилизация перчаток

В последнее время наиболее часто используют одноразовые перчатки, подвергшиеся лучевой заводской стерилизации. При многократном использовании перчаток, основным методом стерилизации становится автоклавирование в щадящем режиме: после дезинфекции, предстерилизационной обработки перчатки высушивают, пересыпают тальком (предупреждает слипание), заворачивают в марлю, укладывают в бикс. Автоклавируют при 1,1 атм. в течение 30 мин, при 1,5 атм. – 15 мин. После надевания стерильных перчаток их обрабатывают марлевым шариком со спиртом для снятия с поверхности талька.

3.3.5 Хирургическая обработка рук различными способами

Одним из важнейших мероприятий по профилактике контактной инфекции является обработка рук хирурга. Для достижения эффективного мытья и обеззараживания рук необходимо соблюдать следующие условия: коротко подстриженные ногти, отсутствие лака на ногтях, отсутствие искусственных ногтей, отсутствие на руках колец. Перед обработкой необходимо снять часы, браслеты.

Основными принципами, на которых строится большинство современных методов обработки рук в хирургии, являются:

  1. механическая очистка – гигиеническое мытье рук мылом и водой для удаления загрязнений и снижения количества микроорганизмов;
  2. химическая дезинфекция – обработка рук кожным антисептиком для снижения количества микроорганизмов до безопасного уровня.

Обработка проводится в два этапа:

1 этап – мытье рук мылом (использование дозаторов) в течение 2 минут. Предпочтение отдают локтевым дозаторам и дозаторам на фотоэлементам. Необходимо держать руки так, чтобы вода стекала к предплечью, а не наоборот. При высушивании рук стерильным полотенцем оно не должно касаться окружающих предметов или одежды. Руки начинают вытирать от пальцев к предплечью.

2 этап – обработка антисептиком кистей, запястий и предплечий. Количество антисептика, необходимое для обработки, кратность обработки и продолжительность определяются в инструкциях по применению конкретного средства. После обработки рук до надевания перчаток руки должны полностью высохнуть. Обработанные руки держат на расстоянии от тела, при этом кисти должны находиться выше, чем локти, пока не будут надеты стерильный халат и перчатки.

Антисептики для обработки рук хирурга

1. 0,5%  хлоргексидин биглюконат (гибитан). Гибитан выпускается в виде 20% водного раствора. Для получения 0,5% спиртового раствора препарат разводят в 70% этиловом спирте в соотношении 1: 40.

  • Руки моют с мылом.
  • Высушиваю стерильным полотенцем,
  • Обрабатываю тремя тампонами, смоченными раствором, по 1 мин каждым.
  • Высушивают и надевают перчатки.

2.Раствор АХД – 2000- Экспресс

  • Механическая очистка рук.
  • На кисти наносят средство АХД – 2000- Экспресс дважды по 5 мл и втирают его в кожу кистей и предплечий (поддерживая руки во влажном состоянии) в течение 1 минуты. Общее время обработки составляет 2 минуты.
  • Стерильные перчатки надевают после полного высыхания средства.

3.Раствор первомура (С- 4) – смесь муравьиной кислоты, пероксида водорода и воды. Готовится по мере надобности.

  • Механическая очистка рук, руки высушивают полотенцем.
  • Моют в растворе в течение 1 минуты
  • Высушивают стерильным полотенцем и надевают перчатки.

В одном тазике, не меняя раствора, могут вымыть руки до 10 человек.

        Для быстрой обработки рук в последние годы сконструированы специальные аппараты с ультразвуковыми ваннами, в которых мытье рук и дезинфекция рук проводится в течение 1 минуты. Мытье осуществляется погружением рук в 0,5% спиртовый раствор хлоргексидина, через который пропускают ультразвуковые волны.

Классический метод обработки рук Спасокуккоцкого – Кочергина имеет лишь исторический интерес и в настоящее время не используются.

Метод Спасокуккоцкого – Кочергина

  • Мытье рук в течение 1 минуты.
  • Обработка рук в двух тазах с 0,5% раствором свежеприготовленного нашатырного спирта, используя стерильную салфетку, по 3 минуты в каждом.
  • Высушить стерильным полотенцем.
  • В течение 5 минут обрабатывать 960 спиртом.

3.3.6 Способы обработки операционного поля

        Обработка операционного поля проводится в два этапа.  Первый этап - это гигиеническое обмывание операционного поля мыльным раствором с водой и сбривание волос. Накануне операции производится санитарно-гигиеническая обработка больного (мытье в ванне или под душем, смена постельного и нательного белья), если к этому нет особых противопоказаний, а операция не выполняется по срочным показаниям.

Перед доставкой больного в операционную сбриваются волосы, находящиеся в области предполагаемого операционного разреза и в непосредственной близости от него. При операциях на волосистой части головы сбривают все волосы.

Второй этап- обработка растворами  антисептиков. Обработку операционного поля предпочтительно проводить антисептиком, содержащим краситель.  при этом соблюдаются следующие правила:

  1. Широкая обработка,
  2. Последовательность « от раны к периферии» при чистой ране, «от периферии к центру» - при загрязненной,
  3. Многократность обработки во время операции. Обработка кожи проводится перед ограничением стерильным бельем, непосредственно перед разрезом, периодически в ходе операции, перед наложением швов на кожу и после него.

Обработка гибитаном (хлоргексидинабиглюконатом)

        Используется 0,5% раствор (препарат разводят 70% спиртом в соотношении 1: 40).  Операционное поле обрабатывается дважды в течение 3 минут, дополнительно периодически в ходе операции, перед наложением швов на кожу и после него.

        К кожным антисептикам также относят диоцид, дегмицид, асептол, новосепт, роккал, АХД – 2000 и др.

        После обработки операционное поле обкладывается стерильными простынями для предупреждения контаминации рук хирурга во время операции от нестерильных частей тела больного и расположенных рядом предметов. После обкладывания операционного поля производится окончательная обработка области разреза кожи.

Для асептической защиты в современной хирургии применяется разрезаемое операционное покрытие. Прозрачная самоклеющая пленка наклеивается на операционное поле после его традиционной обработки антисептиками и ограничения операционным бельем. Наклеивается на кожу и белье одновременно, пленка фиксирует операционное белье (вместо цапок). Хирург производит разрез непосредственно по пленке. Хирург получает абсолютно стерильное операционное поле в течение всей операции. Удаляется перед зашиванием раны.

4.Профилактика   имплантационной инфекции. Стерилизация шовного материала

Многие материалы, применяемые в процессе операции, длительно или навсегда остаются в организме больного.

        Имплантация – внедрение, вживление в организм больных чужеродных материалов (шовный материал, протезы, винты, металлоконструкции и т.д.) с лечебной или косметической целью.

        Имплантационный путь контаминации имеет 100% - ую контагиозность.  Поэтому профилактика распространения имплантационной контаминации состоит в строжайшем соблюдении стерильности всего, что вживляется в организм. Основным вероятным источником имплантационной инфекции является шовный материал.

Шовный материал классифицируют по  следующим признакам:

1. по происхождению: синтетические и нити природного происхождения. В современной хирургии используют четыре нити природного происхождения: шелк, лен, хлопок, кетгут. Кетгут изготавливают из подслизистого слоя кишечника крупного рогатого скота. Основной тенденцией в хирургии является переход от нитей натурального происхождения к синтетическим. Это обусловлено существенными недостатками натуральных нитей- выраженной воспалительной реакцией тканей на шовный материал (кетгут, шелк), фитильностью нити (шелк, хлопок, лен), непредсказуемостью сроков рассасывания (кетгут).

2. по способности к биодеструкции:

-  рассасывающиеся:

  • кетгут;
  • коллаген;
  •  материалы на основе целлюлозы: окцелон, кацелон;
  • на основе полигликолидов: полисорб, викрил, дексон, максон;
  • полидиоксанон: ПДС, ПДС - 2;
  • монокрил;
  • капроаг;
  • полиуретан.

- медленно рассасывающиеся:

  • шелк;
  • полиамидные (капроновые) нити: капрон, этилон, нуролон, дермалон, монософ.

- нерассасывающиеся:

  • полиэфиры: лавсан, суржидак, мерсилен, этибонд;
  • полиолефины: суржипро, пролен, полипропилен, суржилен;
  • фторполимеры: флексамид;
  • поливинилиден;
  • металлическая проволока;
  • нитинол.

Кетгутовые нити полностью рассасываются в организме через 2 - 3 недели. Шелковые нити выводятся из организма примерно за 2 года, нити из полиамида за 5- 6 лет.

Рассасывающиеся нити используются для сшивания быстро срастающихся тканей: мышц, подкожно - жировой клетчатки, при операциях на органах ЖКТ, желчных и мочевыводящих путях.

Медленно рассасывающиеся и нерассасывающиеся нити применяются для наложения швов на кожу, подкожно - жировую клетчатку, ушивании разрезов грудной и брюшной стенки.

3. по структуре нити:

- мононить (монофиламентная) в сечении представляет единую структуру с абсолютно гладкой поверхностью.

- полинить (многофиламентная) в сечении состоит из множества нитей:

  • крученая нити изготавливается путем скручивания нитей по оси;
  • плетеная нить получается путем плетения по типу каната;
  • комплексная нить - это плетенная нить, пропитанная или покрытая полимерными материалами.

В настоящее время основным способом стерилизации шовного материала является лучевая стерилизация в заводских условиях. В условиях стационара чаще всего стерилизуется капрон и металлический шовный материал (проволока, скобки). Нити капрона перед стерилизацией укладывают в специальные пакеты и стерилизуют паром под давлением (в автоклавах) при давлении  2 атм, 132 0 С, 20 минут.

5.Виды антисептики (механическая, физическая, химическая, биологическая)

Антисептика – это комплекс мероприятий, направленных на уменьшение количества микробов в ране, снижение их жизнеспособности, опасности проникновения в окружающие ткани и другие среды организма, а также на снятие интоксикации, повышение иммунно – биологической активности больного организма и его реактивности.

        Основные виды: механическая, физическая, химическая, биологическая и смешанная.

Механическая антисептика включает:

  1. Туалет раны.  Проводится во время любой перевязки. При перевязки чистых ран после снятия повязки с раны, сначала обрабатывают линию швов, затем кожу вокруг шва и накладывают асептическую повязку. При перевязке гнойных ран туалет включает удаление гноя вокруг раны, обработку кожи раствором антисептика, удаление гноя из раны марлевым шариком или удаление некротических тканей пинцетом. Для очищения полости раны используют раствор перекиси водорода. Как правило, рану дренируют.
  2. Первичная хирургическая обработка раны (ПХО). В зависимости от сроков выполнения она подразделяется на раннюю (в первые 12 часов после ранения, под прикрытием антибиотиков до 24 часов), отсроченную (в течение от 24 до 48 часов), позднюю (после 48 часов при отсутствии в ране воспалительного процесса). ПХО производится для уменьшения в ране нежизнеспособных тканей, являющихся благоприятной питательной средой для микрофлоры. Техника операции состоит в рассечении раны, ее карманов и иссечения краев, стенки и дня раны в пределах здоровых тканей. Удаляются все поврежденные, загрязненные, пропитанные кровью ткани, инородные тела, сгустки крови, не повреждая крупные сосуды и нервы. После иссечения меняют инструменты, перчатки и проводя перевязку мелких сосудов с последующим наложением швов на рану.
  3. Вторичная хирургическая обработка раны выполняется в случаях, когда раневой процесс осложнился инфекционным воспалением. Удаляются некротические ткани, выясняется, нет ли в ране углубление, карманов или затеков, из которых затрудненно вытекание экссудата. При наличие затруднений для оттока, ход расширяется. Швы на рану не накладываются, операцию завершают дренированием гнойных полостей.

5.1Методы дренирования (пассивное, активное, проточно-промывное), виды дренажей

Физическая антисептика – это применение физических методов, которые создают неблагоприятные условия для развития бактерий и уменьшают всасывание микробных токсинов и продуктов распада тканей.

Крайне важным элементом физической антисептики является дренирование.

Дренирование – лечебный метод, заключающийся в выведении наружу содержимого из ран, гнойников, содержимого полых органов, естественных или патологических полостей тела. 

Дренирование осуществляется при помощи дренажей.  Дренажи делятся на марлевые, плоские резиновые, трубчатые и смешанные.

Марлевые дренажи - это тампоны и турунды, которые готовят из гигроскопической марли. С помощью их проводят тампонаду раны. Тампонада ран бывает тугая и рыхлая.

Тугая тампонада применяется при остановке кровотечения из мелких сосудов сухими или смоченными в растворах (3% перекиси водорода, 5% аминокапроновой кислоты, тромбина) марлевыми турундами. Такая турунда оставляется в ране от 5 мин до 2 ч. При недостаточном росте гранулёзной ткани в ране проводится тугая тампонада по Вишневскому с мазью. В этом случае турунда оставляется в ране 5-8 дней.

Рыхлая тампонада используется для очистки загрязнённой или гнойной раны с неспадающимися краями. Марлевые дренажи вводят в рану рыхло, чтобы не препятствовать оттоку отделяемого. При этом лучше вводить тампоны, смоченные антисептическими растворами. Марля сохраняет дренажную функцию только 6-8 часов, затем она пропитывается раневым отделяемым и препятствует оттоку. Поэтому при рыхлой тампонаде марлевые дренажи надо менять 1-2 раза в день.

Плоские резиновые дренажи - изготавливаются из перчаточной резины путём вырезания полосок различной длины и ширины. Они способствуют пассивному оттоку содержимого из неглубокой раны. Для улучшения оттока сверху дренажа накладывается салфетка, смоченная антисептиком. Смену таких дренажей проводят ежедневно.

Трубчатые дренажи готовят из резиновых, латексных, полихлорвиниловых, силиконовых трубок диаметром от 0,5 до 2,0 см. Трубчатый дренаж по спирали боковых поверхностей имеет отверстия размерами не более диаметра самой трубки. Трубчаты дренажи бывают одинарные, двойные, двухпросветные, многопросветные. По ним идёт отток содержимого из глубоких ран и полостей тела, можно проводить промывание раны или полости антисептическими растворами. Удаляются из ран такие дренажи на 5-8 день.

Микроирригатор - это трубчатый дренаж без дополнительных отверстий на боковой поверхности трубки. Применяют его для введения лекарственных веществ в полости тела.

Смешанные дренажи - это резиново-марлевые дренажи или «сигарные дренажи»-  внутрь резиновой перчатки или ее пальца рыхло вводится полоски марли или слоями переложенные марлевые сафетки и резиновые полоски дренажа. Применяются смешанные дренажи только в неглубоких ранах.

Закрытый дренаж - это трубчатый дренаж, свободный конец которого пережат зажимом. Применяется он для введения лекарственных средств или выведения содержимого раны и полости с помощью шприца. К закрытым дренажам относятся микроирригаторы, дренажи из плевральной полости.

Открытый дренаж - это трубчатый дренаж, свободный конец которого накрывается марлевой салфеткой или погружается в стерильный сосуд с антисептическим раствором.

Различают три основных вида дренирования: пассивное, активное и проточно-промывное. Для пассивного дренирования используют полоски перчаточной резины; так называемый "сигарообразный дренаж; резиновые и полихлорвиниловые трубки. При пассивном дренировании отток идёт по принципу сообщающихся сосудов, поэтому дренаж должен находиться в нижнем углу раны, а второй свободный его конец - ниже раны.

При активном дренировании в области наружного конца дренажа создается отрицательное давление. Для этого к дренажам прикрепляется специальная пластмассовая гармошка, резиновый баллончик или специальный электрический отсос. Активное дренирование возможно при герметичности раны, когда на неё на всём протяжении наложены кожные швы.

При проточно-промывном дренировании в рану устанавливается не меньше 2 дренажей. По одному из них постоянно в течение суток осуществляется введение жидкости (лучше антисептического раствора), а по другому она вытекает. Введение в дренаж осуществляется наподобие внутривенных капельных вливаний. Способ очень эффективен и позволяет в ряде случаев зашивать наглухо даже инфицированные раны, что впоследствии ускоряет процесс заживления. Важно следить за тем, чтобы в ране не было задержки: количество отекающей жидкости должно быть равно количеству введённой. Подобный метод может быть использован при лечении перитонита и тогда называется перитонеальным диализом. Если кроме антисептика в рану вводить и протеолитические ферменты, то такой метод называется проточным ферментативным диализом. Это один из примеров смешанной антисептики - сочетание физического, химического и биологического методов.

Помимо использования различных видов дренирования, в современной хирургии все больше применение находят и другие методы физической антисептики, к которым относят:

  • применение сорбентов в ране (полифепан), которые адсорбируют на себя токсины и микроорганизмы;
  • применение ультразвука (ультразвуковая кавитация ран), который способствует улучшению микроциркуляции в стенках раны, отторжению некротической ткани;
  • применение лазерного излучения малой мощности. Бактерицидное действие на стенки раны снимает воспаление, очищает от гноя и стимулирует защитные силы организма пациента;
  • применение рентгеновского излучения для подавления инфекции в небольших, глубоко расположенных очагах (лечение остеомиелита, перитонита).

5.2 Основные  группы антисептических и дезинфицирующих средств, способы их применения

Химическая антисептика – это уничтожение микроорганизмов в ране, патологическом очаге или организме пациента и в среде вокруг него с помощью различных химических веществ. Это химические вещества, использующиеся для дезинфекции инструментов, мытья полов, стен, обработки предметов ухода; антисептические вещества для обработки кожи, рук, промывания ран и слизистых; химиотерапевтические средства для введения внутрь и оказания резорбтивного действия в организме больного, подавления роста бактерий в различных патологических очагах.

Основные группы химических антисептиков

1.Альдегиды:

  • Формалин – 37% раствор формальдегида. Сильное дезинфецирующее средство. Применяется при фиксации препаратов для гистологического исследования, в сухом виде для стерилизации в газовых стерилизаторах.
  • Лизоформ – мыльный раствор формальдегида; 1 – 3% растворы применяют для обработки помещений.
  • Глутаральдегид выпускается в виде 25% водного раствора. Сайдекс – 2% водный раствор глутарового диальдегида. Применяется для дезинфекции и стерилизации катетеров, хирургического инструментария, эндоскопов.

2.Антисептики растительного и животного происхождения:

  • Хлорофиллипт – экстракт листьев эвкалипта- спиртовой раствор ярко – зеленого цвета. Обладает антибактериальной активностью в отношении антибиотикоустойчивых стафилококков. Применяется внутрь, внутривенно, местно, внутриполостно.
  • Эктирицид – препарат полученный из рыбьего жира, обладает выраженной антибактериальной активностью.
  • Календула .  Обладает антибактериальным, ранозаживляющим действием. Выпускается в виде мази, настойки, крема и таблеток.

3.Дегти, смолы:

  • Деготь березовый- продукт сухой переработки наружной части коры березы (бересты). Применяют наружно для лечения кожных заболеваний в виде мазей и линиментов. Является составной частью линимента по А.В. Вишневского.
  • Ихтиол – черная сиропообразная жидкость с резким своеобразным запахом, оказывает противовоспалительное, местно – обезболивающее и антисептическое действие. Применяют наружно.

4.Детергенты:

  • Хлоргексидина биглюконат (гибитан) – препарат эффективен в отношении грамположительных и грамотрицательных бактерий, обладает и фунгицидным действием. Выпускается в виде 20% водного раствора. Используется для обработки рук, операционного поля, промывания ран и ожогов в различных концентрациях.
  • Дегмицид содержит 30% препарата дегмина. Применяется в разведении 1: 30, т.е. в виде 1% раствора для обработки рук и операционного поля.
  • Роккал – малотоксичный антисептик. Оказывает местное бактерицидное действие на грамположительные и грамотрицательные бактерии; в отношении бактериальных спор и микобактерий туберкулеза неэффективен. Применяют для обработки рук хирурга, операционного поля, дезифекции предметов ухода за больными.
  • Мирамистин. Губительно действует на грамположительные, грамотрицательные бактерии, грибы, вирусы, простейшие, анаэробные и аэробные, спорообразующие микроорганизмы. Применяют для профилактики нагноения и лечения гнойных ран.

На основе детергентов готовят пленкообразующие препараты («церигель»), мази («Этоний»), которые обладают местно анестезирующим действием и стимулируют заживление ран, язв.

5.Красители :

  • Бриллиантовый зеленый – антисептическое средство наружного применения. Применяют 1 – 2% раствор для обработки ран.
  • Метиленовый синий - антисептическое средство наружного применения. Применяют при ожогах, гнойных заболеваниях кожи.
  • Этикридина лактат (риванол) – желтый кристаллический порошок, используют свежеприготовленные растворы (нестойки к свету). Применяют 0,05% - 0,2% водные растворы для обработки свежих и инфицированных ран, гнойных полостей.

6.Кислоты и щелочи:

  • Борная кислота - антисептическое средство наружного применения. 2 – 4% раствор используется для промывания и лечения гнойных ран. В последнее время показания резко ограничены.
  • Салициловая кислота входит в состав присыпок, мазей , обладает антисептическим, раздражающим, кератолитическим действием.
  • Нашатырный спирт - антисептическое средство наружного применения. Раньше 0,5% раствор использовался для обработки рук.

7.Окислители:

  • Перекись водорода - антисептическое средство наружного применения. 3% раствор применяется для очистки ран от гноя, некротических тканей, кровяных сгустков, микробов, облегчает снятие прилипших к ране повязок, в свежих ранах ускоряет свертываемость крови.
  • Калия перманганат применяется в виде 2 – 5% раствора для лечения ожогов и отморожений, для промывания мочевого пузыря, влагалищных спринцеваний, полоскания рта.

8.Спирты:

  • Этиловый спирт обладает дезинфицирующим (70%) и дубящим (96%) действием, вызывает денатурацию белка.

9.Галоиды:

  • Йод - антисептическое средство наружного применения. Применяют для обработки ран.
  • Йодонат, Йодопирон – антисептики наружного применения. Применяются для огбработки ран, операционного поля.
  • Раствор Люголя - антисептическое средство наружного применения. Используется для лечения воспаленных слизистых.
  • Хлорамин Б- дезинфицирующее средство. 3% раствор применяется для дезинфекции предметов ухода и помещений.

10.Соли тяжелых металлов:

Сильнодействующие, вызывающие коагуляцию белков бактерий. Многие из них из – за токсичности в настоящее время не употребляются.

  • Нитрат серебра (ляпис) - антисептическое средство наружного применения. 0,1 – 2% раствор используется для промывания конъюнктивы, слизистых оболочек; 5 – 20 % раствор обладает прижигающим действием.
  • Протаргол, Колларгол - антисептическое средство наружного применения. Используются для смазывания слизистых, промывания мочевого пузыря.
  • Оксид цинка - антисептическое средство наружного применения. Входит в состав многих присыпок и паст, обладает противовоспалительным эффектом.

11.Производные нитрофурана:

  • Фурациллин  выпускается в виде желтого порошка или таблеток по 0,1 г. применяют наружно при лечении гнойных и ожоговых ран, пролежней, гнойных заболеваний кожи и промывания полостей в виде водного 0,02% раствора, 0,2% мази. Использование фурациллина в настоящее время нецелесообразно ввиду его крайне низкой антимикробной активности.
  • Фурадонин, фуразолидон – антисептик внутреннего применения. Применяется при воспалительных заболеваниях мочевых путей, в лечении гнойных ран.

12.Производные хиноксалина:

  • Диоксидин особо эффективен при общей гнойной инфекции, тяжелых гнойных – воспалительных процессах различной локализации, газовой гангрене. Применяют местно в виде 0,5 – 1% раствора или 5% мази для лечения гнойных ран или промывания полостей.

13.Сульфаниламиды:

  • Стрептоцид, норсульфазол, сульфадимезин - короткого действия.
  • Сульфазин, бисептол  – среднего срока действия.
  • Сульфадемитоксин – длительного действия.
  • Сульфален – сверхдлительного действия.

Их применяют местно – в растворах, мазях, аэрозолях, и для общего лечения гнойной инфекции – в таблетках и парентерально.

5.3 Биологическая антисептика

Сущность биологической антисептики заключается в применении методов  и  средств,  повышающих  иммунобиологические силы организма, создающих биологическую несовместимость для существования и развития микробов в ране.

К таким средствам относят:

  • антибиотики;
  • протеолитические ферменты;
  • препараты для пассивной иммунизации: лечебные сыворотки, анатоксины, гамма-глобулины, бактериофаги, гипериммунная плазма;
  • методы экстракорпоральной дезинтоксикации организма.

Антибиотикотерапия

Антибиотики – вещества, являющиеся продуктами жизнедеятельности микроорганизмов, подавляющие рост и развитие определенных групп других микроорганизмов.

Основные группы антибиотиков:

1. Пенициллины:

  • бензилпенициллин (природный антибиотик);
  • полусинтетические  пенициллины:  пенициллазоустойчивые - оксациллин, метициллин, ампициллин, амоксициллин;
  • комбинированные: ампиокс, аугментин, уназин.

2. Цефалоспорины: цефазолин, цефамандол, цефаклор, кефзол, цефуроксим, цефтриаксон, цефпиром.

3. Аминогликозиды:  стрептомицин, гентамицин, канамицин, тобрамицин, сизомицин, амикацин, нетромицин.

4. Тетрациклины: тетрациклин, метациклин, доксициклин.

5. Макролиды: эритромицин, рокситромицин, азитромицин, кларитромицин.

6. Левомицитины: левомецитин, синтомицин.

7. Рифампицины: рифампицин.

8. Противогрибковые антибиотики: леворин, нистатин, флюконазол.

9. Полимиксин В.

10. Линкозамины: линкомицин, клиндамицин.

11. Фторхинолоны: офлоксацин, ципрофлоксацин и др.

12. Карбапенемы: импенем, меропенем.

13. Гликопептиды: ванкомицин, эремомицин, тейкопланин.

Основные принципы антибактериальной терапии

  1. Применение антибиотиков только по строгим показаниям.
  2. Назначать максимальные терапевтические или при тяжелых формах инфекции субтоксические дозы антибиотиков.
  3. Соблюдать кратность введения в течение суток для поддержания постоянной бактерицидной концентрации препарата в плазме крови.
  4. При необходимости длительного лечения антибиотиками их надо менять каждые 5-7 дней, во избежание адаптации микрофлоры к антибиотикам.
  5. Производит смену антибиотика при его неэффективности.
  6. При выборе антибиотика основываться на результатах исследования чувствительности микрофлоры.
  7. Учитывать синэргизм и антагонизм при назначении комбинации антибиотиков, а также антибиотиков и других антибактериальных препаратов.
  8. При назначении антибиотиков обращать внимание на возможность побочных эффектов и токсичность препаратов.
  9. Для профилактики осложнений аллергического ряда тщательно собирать аллергологический анамнез, в ряде случаев обязательным является проведение кожной аллергической пробы (пенициллины).
  10. При длительных курсах антибиотикотерапии назначать противогрибковые препараты для профилактики дисбактериоза, а также витамины.
  11. Использовать оптимальный путь введения антибиотиков.

Антибиотикопрофилактика

Под профилактическим применением антибиотиков в хирургии понимают их предоперационное введение с целью снижения риска развития послеоперационной раневой инфекции.

Современная концепция антибиотикопрофилактики базируется на следующих принципах:

  • При проведении антибиотикопрофилактики не следует стремиться к полной эрадикации бактерий. Значительное уменьшение их числа облегчает работу иммунной системы и предотвращает развитие гнойных осложнений.
  • Эффективная концентрация антибиотика в операционной ране должна быть достигнута к началу операции и сохраняться до ее окончания.
  • Для большинства плановых и экстренных оперативных вмешательств оптимальным принято считать введение антибиотика во время вводного наркоза - за 30-40 мин до операции.
  • Доза антибиотика при антибиотикопрофилактике соответствует обычной терапевтической дозе.
  • Предпочтительным является в/в введение антибиотика, что обеспечивает его оптимальную концентрацию в сыворотке крови во время операции
  • Продолжение введения антибиотика более чем через 24 ч после операции не приводит к повышению эффективности антибиотикопрофилактики.
  • С точки зрения эффективности и безопасности наиболее приемлемыми антибиотикопрофилактики в хирургии являются цефалоспорины I-II поколения (цефазолин, цефуроксим) и аминопенициллины (амоксициллин/клавуланат, ампициллин/сульбактам).

Энзимотерапия

Применение протеолитических ферментов способствует быстрому  очищению инфицированных ран,  гнойных полостей от нежизнеспособных участков тканей,  сгустков фибрина, гноя.  Кроме  того,  они  обладают противовоспалительным и противоотечным действием, повышают активность антибиотиков.      

В настоящее время применяют:

  1. Протеолитические  ферменты   животного   происхождения (трипсин, плазмин, химотрипсин, химопсин, рибонуклеаза).
  2. Микробные  ферменты (стрептокиназа, коллагеназа, гиалуронидаза).
  3. Протеолитические  ферменты растительного происхождения (бромелаин, папаин, дебрицин, террилитин).
  4. Ируксол – мазь, содержащая фермент клостридилпептидазу и антибиотик левомецитин.

Применение протеолитических ферментов для лечения гнойных ран и трофических язв позволяет быстрее добиться их очищения от гнойно-некротических тканей, насыщенных микробами и являющихся для них хорошей питательной средой. По существу, производится некрэктомия без применения скальпеля.

Иммунотерапия

Существует три метода влияния на иммунитет:

  • пассивная иммунизация;
  • активная иммунизация;
  • иммуномодуляция.

Пассивная иммунизация - это введение в организм готовых антител к тем или иным возбудителям хирургической инфекции. Для этого применяют препараты, содержащие антитела: гипериммунную плазму, гамма - глобулины, сыворотки. В хирургии применяется антистафилококковую, антисинегнойную, антиколибациллярную гипериммунные плазмы.

Антистафилококковая гипериммунная плазма- это нативная (жидкая или замороженная) плазма крови доноров, иммунизированных адсорбированным стафилококковым анатоксином. Применяют плазму при тяжелых инфекционных заболеваниях, вызванных стафилококками (сепсис, гнойный перитонит, остеомиелит и др.). Препарат вводят внутривенно однократно или повторно в зависимости от состояния больного, доза 4—6 мл/кг. Обычно применяют по 150 - 200 мл через день (на курс 3 - 5 в/венных вливаний).

Антистафилококковый гамма – глобулин получают из крови доноров, иммунизированных адсорбированным стафилококковым анатоксином. Выпускается в ампулах. Применяют антистафилококковый гамма - глобулин для лечения и профилактики заболеваний, вызванных стафилококком. Вводится внутримышечно. Одна лечебная доза содержит 100 ME антитоксина. Производят 5 - 10 в/мышечных инъекций по 5 мл препарата через день.

Противостолбнячный гамма – глобулин получают из крови доноров, иммунизированных столбнячным анатоксином.

Выпускается в ампулах. 1 мл препарата содержит 150 ME противостолбнячных антител. Применяется для профилактики и лечения столбняка. Вводится внутримышечно.

Противостолбнячная сыворотка -иммунная сыворотка, получают из крови животных (лошадей), иммунизированных столбнячным анатоксином. Применяют для профилактики и лечения столбняка.

Противогангренозная сыворотка -иммунная сыворотка содержащая антитела к основным возбудителям газовой (анаэробной) гангрены.

Применяется для профилактики и лечения газовой гангрены.

Средства пассивной иммунизации дают только кратковременный эффект, поэтому одновременно надо проводить активную иммунизацию.

Активная иммунизация- введение антигенов для выработки своих антител. С этой целью применяют вакцины, анатоксины.

Стафилококковый анатоксин  вводится дробно подкожно в подлопаточную область через каждые 3 дня в возрастающих дозах от 0,1 до 1 мл. После третьего введения титр антитоксических антител увеличивается в 4 - 5 и более раз.

Столбнячный анатоксин применяется для плановой и экстренной профилактики столбняка.

Иммуномодуляция. Для стимуляции иммунитета могут применяться различные неспецифические стимуляторы: экстракт алоэ, аутогемотерапия и др. Их недостатком является то, что стимулирующее действие осуществляется в слепую на всю иммунную систему, а не на конкретный механизм. Поэтому в настоящее время следует стремиться не к иммуностимуляции, а к иммундомодуляции, то есть воздействовать только на дефектное звено иммунитета. В качестве иммуномодуляторов используют препараты, получаемые из тимуса влияющие на Т-популяцию лимфоцитов, различные лимфокины, интерлейкины, интерфероны.

В хирургии используют продигиозан, лизоцим, левамизол (декарис).

Продигиозан- бактериальный полисахарид, активирует Т - систему иммунитета, стимулирует лейкопоэз и фагоцитоз. Назначают при снижении активности фагоцитоза и угнетение лейкопоэза. Применяют по 50 мкг 4 раза в сутки с интервалом 3-4 дня.

Левамизол (декарис) стимулирует синтез антител, образование фагоцитов, Т - лимфоцитов. Назначают при угнетении фагоцитоза.

Лечение проводят курсом (курсовая доза 150 мг). Назначают 6 раз в сутки через день.

Лизоцим- естественный гуморальный фактор неспецифической реактивности, действует бактерицидно. Усиливает действие антибиотиков, повышает неспецифическую резистентность.

Т и м а л и н (тимарин)- получают из вилочковой железы (тимуса) крупного рогатого скота. Обладает стимулирующим действием на реакцию клеточного иммунитета, регулирует количество Т- и В-лимфоцитов, усиливает фагоцитоз. Применяют при острых и хронических гнойных процессах, сопровождающихся снижением клеточного иммунитета. Вводят внутримышечно по 10—30 мг ежедневно в течение 5—20 дней.

Тактивин- получают из вилочковой железы крупного рогатого скота. Применяют при гнойно-воспалительных заболеваниях, сепсисе, когда выявлены иммунодефицитные состояния с поражением Т - системы. Применяют по 1—2 мкг/кг на ночь в течение 5—14 дней.

В последнее время стали использоваться интерфероны и интерлейкины. Они обладают более целенаправленным и сильным воздействием на иммунную систему. Наиболее эффективными являются новые препараты, полученные методом генной инженерии, реаферон, роферон, ронколейкин и беталейкин.

Для стимуляции иммунитета применяют различные экстракорпоральные методики иммуномодуляции: ультрафиолетовое и лазерное облучение крови, гемосорбция, гипербарическая оксигенация и т. п. Эти методы активизируют фагоцитоз, систему комплемента, улучшают функцию переноса кислорода и реологические свойства крови. Применяются они в острую фазу инфекционного процесса, а также для профилактики его рецидивов.

Методы экстракорпоральной дезинтоксикации организма

Дезинтоксикация - это нейтрализация или выведение токсинов из организма. В настоящее время применяются следующие методы дезинтоксикации:

  1. Экстракорпоральная гемосорбция. Сущность метода заключается в непосредственном контакте циркулирующей крови в специальном устройстве (аппарате) с  поверхностью сорбента (активированного угля), что приводит к нейтрализации микробных и тканевых токсинов.
  2. Лимфосорбция – позволяет удалить токсины, накапливающиеся в лимфатической системе. С этой целью производится катетеризация грудного лимфатического протока.
  3. Гемодиализ – в основе метода лежат процессы диффузии и ультрафильтрации в аппарате «Искусственная почка», что приводит к удалению азотистых шлаков и токсинов. Наряду с этим ультрафильтрация позволяет удалить избыток жидкости за счет создания вакуума с внешней стороны диализной мембраны.

5.4 Возможные осложнения при использовании различных видов

антисептики и способы их профилактики.

Осложнения антибиотикотерапии:

  1. Пирогенные реакции.

Профилактика: большое разведение антибиотика; медленное введение.

  1. Токсические осложнения могут наблюдаться при использовании средних терапевтических доз, при длительном применении (аминогликозиды, гликопептиды).

Профилактика: нельзя назначать сразу два антибиотика, относящихся к аминогликозидам или аминогликозид вместе со стрептомицином; нельзя назначать аминогликозиды и стрептомицин при нарушении функции печени и почек, при неврите слухового нерва, при полиневритах; необходимо назначать кальция пантотенат и аскорбиновую кислоту при применении аминогликозидов и стрептомицина.

  1. Аллергические реакции: анафилактический шок,  синдром  сывороточной  болезни (высокая температура,  увеличение  лимфоузлов,  спленомегалия, боль в сустав,  ангионевротический отек, эозинофилия), крапивница, геморрагический   васкулит,  воспалительно-некротические поражения кожи.

Профилактика: аллергологический анамнез; исследование реакции организма на антибиотик путем внутрикожных проб.

  1. Бисбактериоз, кандидомикоз. При длительном применении антибиотиков могут возникнуть изменения в соотношениях естественной флоры организма и ранее непатогенные микроорганизмы (кишечная палочка), начинают проявлять себя как вирулентная флора, вызывая тяжелые энтероколиты, сепсис и др.

Профилактика: разумное назначение антибиотиков; при длительном применении назначать противогрибковые препараты, витамин группы В, аскорбиновую кислоту

  1. Развитие нервно-мышечного блока (курареподобный эффект) (аминогликозиды) при введении сразу после эндотрахеального наркоза.

Профилактика: нельзя вводить аминогликозиды сразу после операции, если она выполнялась под наркозом и с применением мышечных релаксантов и если больной уже дезинтубирован.

  1. Нарушение функции желудочно-кишечного тракта – рвота, понос, эрозивный гастрит, желудочно-кишечные кровотечения (макролиды, тетрациклины).

Для профилактики: при энтеральном назначении рекомендовать после приема пищи, обильное питье; при появлении – отменить и перейти на антибиотик другой группы.

  1. Реакция  обострения  -  токсический  шок  (реакция Яриша-Гексгеймера). Она имеет в своей основе действие эндотоксинов, освобождающихся при массовой гибели микроорганизмов под влиянием антибиотиков в условиях сенсибилизации организма, что вызывает общую и очаговую реакции. Подобные реакции обострения описаны при лечении пенициллином сепсиса, менингококковой, при лечении брюшного тифа левомицетином, при лечении туберкулеза стрептомицином,

Профилактика: избегать ударных доз. Начиная с малых (половинных) доз, в течение нескольких дней быстро их наращивать до получения эффекта

  1. Отрицательное действие на кроветворение (угнетение гемопоэза) (стрептомицин, левомецитин). Для профилактики: витамины В1, B2, B12, В6, аскорбиновая кислота. При развитии: смена препарата.

Основные понятия и термины по теме

Хирургия – это область медицины, изучающая обширную группу заболеваний и травм, для лечения которых применяют оперативное вмешательство, т.е. используется механическое и физическое воздействие на пораженные органы и ткани организма.

Асептикой называют комплекс мероприятий, направленных на предупреждение попадания микроорганизмов в рану.

Антисептика – это комплекс мероприятий, направленных на уменьшение количества микробов в ране, снижение их жизнеспособности, опасности проникновения в окружающие ткани и другие среды организма, а также на снятие интоксикации, повышение иммунно – биологической активности больного организма и его реактивности.

Внутрибольничная инфекция (ВБИ, нозокомиальная)- это любое клинически распознаваемое инфекционное заболевание, которое поражает больного в результате его поступления в больницу или обращения в нее за лечебной помощью, или инфекционное заболевание сотрудника вследствие его работы в данном учреждении.

Стерилизация – метод, обеспечивающий гибель вегетативных, споровых форм патогенных и непатогенных микроорганизмов в стерилизуемом материале.

Дезинфекция – это комплекс мероприятий направленных на уничтожение патогенных и условно-патогенных микроорганизмов в объектах внешней среды с помощью химических средств, физических и других воздействий.

Перевязочный материал – материал, применяемый во время операций, перевязок для осушения ран и полостей, защиты их от вторичного инфицирования, дренирования, а также тампонады с целью остановки кровотечения.

Деконтаминация - процесс уничтожения микроорганизмов в целях обеспечения инфекционной безопасности.

Имплантация – внедрение, вживление в организм больных чужеродных материалов (шовный материал, протезы, винты, металлоконструкции и т.д.) с лечебной или косметической целью.

Дренирование – лечебный метод, заключающийся в выведении наружу содержимого из ран, гнойников, содержимого полых органов, естественных или патологических полостей тела. 

Антибиотики – вещества, являющиеся продуктами жизнедеятельности микроорганизмов, подавляющие рост и развитие определенных групп других микроорганизмов.

Дезинтоксикация - это нейтрализация или выведение токсинов из организма.

Пассивная иммунизация - это введение в организм готовых антител к тем или иным возбудителям хирургической инфекции. Для этого применяют препараты, содержащие антитела: гипериммунную плазму, гамма - глобулины, сыворотки.

Активная иммунизация- введение антигенов для выработки своих антител. С этой целью применяют вакцины, анатоксины.

Контрольно – оценочный материал

  1. Перечислите источники госпитальной инфекции.
  2. Особенности ВБИ.
  3. Пути передачи ВБИ.
  4. Перечислите зоны операционной.
  5. Что относят к перевязочному материалу?
  6. Виды антисептики.
  7. Виды дренирования ран.
  8. К какому методу антисептики относится ПХО раны?
  9. К какому методу антисептики относится дренирование?
  10.  Что такое дезинтоксикация?

СПИСОК РЕКОМЕНДУЕМОЙ ЛИТЕРАТУРЫ.

Основная литература:

  1. Гостищев ВК. Общая хирургия. – М.: ГЕОТАР – МЕД, 2013 – 608 с.
  2. Петров С.В. Общая хирургия. – М.: ГЕОТАР – МЕД, 2014. – 768с.
  3. Рубинина Э.Д. Хирургия. -  М.: издательско – торговая корпорация «Дашков и Ко », 2012.- 592с.

Дополнительная литература:

  1. Барыкина Н.В. Хирургия для фельдшеров. Практикум. – Ростов н/Д.: Феникс, 2014. – 480с.
  2. Гостищев ВК. Руководство к практическим занятиям по общей хирургии. Учебное пособие. – М., 2013. – 224 с.


По теме: методические разработки, презентации и конспекты

Методическая разработка лекционного занятия № 24: «Анатомия и физиология больших пищеварительных желез"

ГОУ СПО «Армавирский медицинский колледж» ДЗ КК «Утверждено»на заседании ЦКОбщих междисциплинарных дисциплинпротокол №____«__» от _________2014председатель ЦМК___________________Парфенова. Е.Г.Ме...

Презентация к Методической разработке лекционного занятия: «Сестринский уход при гипертонической болезни» 12. 2016 г.

Презентация к Методической разработке лекционного занятия «Сестринский уход при гипертонической болезни» подготовлена в соответствии с рабочей программой раздела междисциплинарного курса: «Сестринская...

Методическая разработка лекционного занятия «Сестринский уход при ИБС, стенокардии». 12. 2016 г.

Методическая разработка лекционного занятия «Сестринский уход при ИБС, стенокарди» подготовлена в соответствии с рабочей программой раздела междисциплинарного курса: «Сестринская пом...

МЕТОДИЧЕСКАЯ РАЗРАБОТКА ЛЕКЦИОННОГО ЗАНЯТИЯ по профессиональному модулю ПМ 04: «Выполнение работ по профессии младшая медицинская сестра по уходу за больными» Раздел:. Оказание медицинских услуг в пределах своих полномочий МДК 04.03.Технология оказания м

Методическое пособие разработано для проведения лекционного занятия со студентами по теме: «Участие сестры в различных исследованиях и правила подготовки к ним». «Методическая разработка состав...

Методическая разработка лекционного занятия по теме:"Гельминтозы класса Нематодозы. Аскаридоз".

Нематодозы – наиболее распространенные гельминтозы в общей структуре заболеваемости человечества. Возбудителями их являются паразитические круглые черви, относящиеся к классу Собственно круглые ...

Методическая разработка лекционного занятия по анатомии. Нервная система

Методическая разработка лекционного занятия для студентов СПО по Анатомии по теме: «Анатомо-физиологические особенности нервной системы»...

Методическая разработка лекционного занятия «Основные причины конфликтов и пути их разрешения» (для педагогов дополнительного образования)

В представленной работе рассмотрены теоретические вопросы из области конфликтологии, освещены основные направления и способы урегулирования конфликтных ситуаций, с которыми приходится сталкиваться в п...